301171 UE Übung III A - Molekularbiologische Laborarbeiten (2026S)
Prüfungsimmanente Lehrveranstaltung
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Zusammenfassung
An/Abmeldung
Hinweis: Ihr Anmeldezeitpunkt innerhalb der Frist hat keine Auswirkungen auf die Platzvergabe (kein "first come, first served").
- Anmeldung von Do 12.02.2026 14:00 bis Do 26.02.2026 18:00
- Abmeldung bis Do 26.02.2026 18:00
An/Abmeldeinformationen sind bei der jeweiligen Gruppe verfügbar.
Gruppen
Gruppe 1
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
- Elisabeth Sonnleitner
- Sabine Bechter (TutorIn)
- Ruth Pfefferkorn (TutorIn)
Termine
Verpflichtende Vorbesprechung am 3.3.2026 14:00 SR1
Termin: 13.-30.4.26 ganztägig
Ort: Übungslabor/MPL, Dr. Bohrgasse 9/6.Stock, 1030 Wien
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend !
Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
Gruppe 2
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
- Alois Schweighofer
- Olivia Füßl (TutorIn)
- Pamela Lahner (TutorIn)
Termine
Verpflichtende Vorbesprechung: Mittwoch 4. März 2026 16:30h Seminarraum 1 Dr.-Bohr-Gasse 9/6.501-6.504
Termin: 20.04. - 8.05.2026 ganztägigOrt: Übungslabor A/Teaching Lab A Dr. Bohrgasse 9/6.519 A-1030 WienBegleitendes Seminar 301172 verpflichtend !Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie durch praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung (Golden Gate Klonierung u. konventionelle Klonierung) bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen (GUS, RUBY, GFP) in transgenen Pflanzen, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie, Induktion von Biolumineszenz in Pflanzen, Anwendung von Genomeditierung (CRISPR/Cas9) in Pflanzen.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung (Golden Gate Klonierung u. konventionelle Klonierung) bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen (GUS, RUBY, GFP) in transgenen Pflanzen, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie, Induktion von Biolumineszenz in Pflanzen, Anwendung von Genomeditierung (CRISPR/Cas9) in Pflanzen.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
Gruppe 3
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
- Katharina Semrad
- Ayumi Kinast (TutorIn)
- Klaudia Natalia Nawrocki (TutorIn)
Termine
Termin: 11.- 29.5.26 ganztägig
Ort: Übungslabor/MPL, Dr. Bohrgasse 9/6.Stock, 1030 Wien
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend !
Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
verpflichtende Vorbesprechung: 9. März 2026, 18:30, Dr. Bohrgasse 9/6, 6. floor, SR 1 (6.501/6.504)
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie durch praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 20%)
+) mündliche/schriftliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 20%)
+) mündliche/schriftliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 20%)
+) mündliche/schriftliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) mündliche/schriftliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
Gruppe 4
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
- Angela Witte
- Katharina Fink (TutorIn)
- Magdalena Nemetz (TutorIn)
Termine
verpflichtende Vorbesprechung 13.03.2026, 10 Uhr. Seminarraum 2, Dr. Bohrgasse 9/6, 1030 Wien
Termin: 1.- 19.6.26 ganztägig
Ort: Übungslabor/MPL, Dr. Bohrgasse 9/6.Stock, 1030 Wien
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend !
Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie durch praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
Gruppe 5
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
- Alois Schweighofer
- Olivia Füßl (TutorIn)
- Pamela Lahner (TutorIn)
Termine
Verpflichtende Vorbesprechung: Mittwoch 4. März 2026 16:30h Seminarraum 1 Dr.-Bohr-Gasse 9/6.501-6.504
Termin: 22.06. - 10.07.2026 ganztägigOrt: Übungslabor A/Teaching Lab A Dr. Bohrgasse 9/6.519 A-1030 WienBegleitendes Seminar 301172 verpflichtend !Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie durch praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung (Golden Gate Klonierung u. konventionelle Klonierung) bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen (GUS, RUBY, GFP) in transgenen Pflanzen, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie, Induktion von Biolumineszenz in Pflanzen, Anwendung von Genomeditierung (CRISPR/Cas9) in Pflanzen.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung (Golden Gate Klonierung u. konventionelle Klonierung) bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen (GUS, RUBY, GFP) in transgenen Pflanzen, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie, Induktion von Biolumineszenz in Pflanzen, Anwendung von Genomeditierung (CRISPR/Cas9) in Pflanzen.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
Gruppe 6
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
- Christopher Campbell
- Ananya Dodamani (TutorIn)
- Katharina Nittnaus (TutorIn)
Termine
Vorbesprechung: 22.April 2026, 15.00 Uhr
https://univienna.zoom.us/j/67552611524?pwd=ImEaewYUMxfvKRGd0oa85S8oh537VS.1
Ort: Übungslabor/MPL, Dr. Bohrgasse 9/6.Stock, 1030 Wien
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend !
Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie durch praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 33%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 33%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 33%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: Taschenrechner (Internetzugang, Smartphone, und Schriftliche Materialien sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 33%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 33%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 33%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: Taschenrechner (Internetzugang, Smartphone, und Schriftliche Materialien sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 33%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 33%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 33%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 33%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 33%)
Information
Prüfungsstoff
Inhalt und theoretischer Hintergrund der Übungseinheiten.
Literatur
Lehrveranstaltungsunterlagen in Moodle. Angaben zur vertiefenden Literatur auf den slides im Moodle.
Zuordnung im Vorlesungsverzeichnis
BMG 5
Letzte Änderung: Do 12.03.2026 10:27
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.