330018 UE Biochemische Übungen (2013S)
für Ernährungswissenschafter
Prüfungsimmanente Lehrveranstaltung
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WICHTIGE INFORMATION ZUR ANMELDUNG: http://www.univie.ac.at/strvew/bbs/showthread.php?tid=21571Da die Kurseinteilung AUSSCHLIESSLICH im Rahmen der Vorbesprechung, erfolgt, ist eine Teilnahme daran unbedingt erforderlich (zumindest durch eine bevollmächtigte Vertretung ).VORBESPRECHUNGMi 15.05.2013, 10:30-12:00 UhrOrt: Großer Hörsaal, Institut für Medizinische Chemie und Pathobiochemie, Währinger Str. 10, 1090 WienLEHRVERANSTALTUNGS-TERMINEKurs A: Mo 27.05.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 2 (Inst.f.Med.Chem)Kurs A: Mi 29.05.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 3 (Inst.f.Med.Chem)Kurs A: Mo 03.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 1 (Inst.f.Med.Chem)Kurs A: Mi 05.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 3 (Inst.f.Med.Chem)Kurs A: Fr 07.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 2 (Inst.f.Med.Chem)Kurs A: Di 11.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 1 (Inst.f.Med.Chem)Kurs A: Do 13.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 2 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Fr 31.05.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 2 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Mo 03.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 3 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Di 04.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 1 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Do 06.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 3 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Mo 10.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 2 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Mi 12.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 1 (Inst.f.Med.Chem)Kurs B: Fr 14.06.2013, 12:00-18:00 Uhr - Ort: Übungssaal 2 (Inst.f.Med.Chem)Im Falle einer VERHINDERUNG an der Teilnahme ist eine ABMELDUNG innerhalb der Abmeldefrist UNBEDINGT ERFORDERLICH, da bei unentschuldigtem Fernbleiben eine negative Bewertung erfolgt.Abmeldungen außerhalb dieser Frist können nur mit Zustimmung des LV-Leiters erfolgen.
An/Abmeldung
Hinweis: Ihr Anmeldezeitpunkt innerhalb der Frist hat keine Auswirkungen auf die Platzvergabe (kein "first come, first served").
- Anmeldung von Fr 15.02.2013 08:00 bis Mo 25.02.2013 12:00
- Abmeldung bis Mo 13.05.2013 12:00
Details
max. 120 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch
Lehrende
- Hildegard Laggner
- Stefanie Fruhwürth
- Bernhard Gmeiner
- Sabine Meier
- Angelika Neuhofer
- Hannes Steinkellner
Termine
Zur Zeit sind keine Termine bekannt.
Information
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
immanent, Protokollführung und Auswertung der Experimente
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
Erfahrung aneignen, wie Daten produziert und evaluiert werden, Entwicklung und Erfahrung der Durchführung praktischer Arbeitsschritte, Interpretation der Ergebnisse, Kennen lernen einiger Standardmethoden und Arbeitstechniken im biochemischen Labor.
Prüfungsstoff
Praktikum
Literatur
special script
Zuordnung im Vorlesungsverzeichnis
152
Letzte Änderung: Mo 07.09.2020 15:44
Qualitative, quantitative und semiquantitative Analysemethoden.
Datenerfassung und Auswertung, Fehlerquellen, zufällige und systematische Fehler, Streuung, statistische Erhebung der Präzision mittels Mehrfachpipettierung.
Osmose, Diffusion, Dialyse: Erythrozytenhämolyse in isotonen Lösungen.
Molekularbiologie: cDNA-Klonierung, Nachweis der Einbauorientierung eines in pBluescript klonierten DNA Stückes, Produktion von Proteinen mit Gentechnik-Methoden. DNA-Isolierung aus Gemüse, Nachweis von GVO Konstrukten in Nahrungsextrakten mit Polymerasekettenreaktion. DNA-Gelelektrophorese: Trennung von PCR-Amplifikaten und Restriktionsverdauen.
Photometrie, Enzymdiagnostik, Enzymkinetik: Bestimmung der Michaelis-Menten-Konstante, Ermittlung der maximalen Umsatzgeschwindigkeit (Auswertung mittels Kurvenanpassung und Linearisierung nach Lineweaver-Burk am PC), Bestimmung der LDH-Aktivität mit statistischer Auswertung am PC.
Erstellen einer Absorptionskurve am Photometer, Gesamt-Proteinbestimmung im Serum; Messung der Kreatinin-Clearance. Glucosebestimmung in normalen und hyperglykämischen Proben mittels Reflocheck mit statistischer Analyse.
Chromatographischen Methoden: Dünnschichtchromatographie von Aminosäuren und Molekularsieb-Gelchromatographie (Gelfiltration). Elektrophoretische Trennungen: Serumproteinelektrophorese.
Proteinanalytik: Bestimmung des isoelektrischen Punktes einer Casein- bzw. Albuminlösung.
Bestimmung der Enzymaktivität der Pankreas-Amylase und -Lipase.
Immunologische Methoden: Nachweis des Milchallergens Casein mittels ELISA. Isotopen-Markierung und Nachweismethoden: Hormonstatus T3, T4, FT3, FT4 durch Radioimmunassay (RIA).