301171 UE Übung III A - Molekularbiologische Laborarbeiten (2020W)
für den Schwerpunkt Mikrobiologie/Genetik
Prüfungsimmanente Lehrveranstaltung
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VOR-ORT
Zusammenfassung
An/Abmeldung
Hinweis: Ihr Anmeldezeitpunkt innerhalb der Frist hat keine Auswirkungen auf die Platzvergabe (kein "first come, first served").
- Anmeldung von Do 10.09.2020 08:00 bis Do 24.09.2020 18:00
- Abmeldung bis Sa 31.10.2020 18:00
An/Abmeldeinformationen sind bei der jeweiligen Gruppe verfügbar.
Gruppen
Gruppe 1
max. 16 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
Termine (iCal) - nächster Termin ist mit N markiert
Verpflichtende Vorbesprechung: 9. Oktober 11-12 Uhr, über Zoom.
Termin: 16. - 27.11.2020
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend !
Ort: ÜS 1, Ebene 6, BZB, Dr. Bohrgasse 9, 1030 Wien.
Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
- Freitag 09.10. 11:00 - 12:00 Digital (Vorbesprechung)
- Montag 16.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Dienstag 17.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Mittwoch 18.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Donnerstag 19.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Freitag 20.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Montag 23.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Dienstag 24.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Mittwoch 25.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Donnerstag 26.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
- Freitag 27.11. 09:00 - 17:05 BZB-Übungsraum 1A, 6.Ebene 6.519, Dr.-Bohrgasse 9, 1030 Wien
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie, praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.Im Rahmen des Praktikums sollen grundlegende molekularbiologische Techniken erlernt und selbständig durchgeführt werden. Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen):z.B.: Klonierung bestimmter Gene (inklusive PCR Amplifikation) und Expression in E. coli, Nachweis des Proteins mittels Westernblott Analyse. RNA Aufreinigung, Detektion von DNA abschnitten mittels Southern Blot. Gene in Hefe- und Pflanzenexpressionsvektoren; Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Transformation pflanzlicher Protoplasten, Expression von GFP (grün fluoreszierendes Protein) und GFP-Fusionsproteinen, in Hefe- und Pflanzenzellen, Expressionsanalyse von Reportergenen, Detektion von GFP im Fluoreszenzmikroskop.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit. Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen: Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche, schriftliches Protokoll, theoretisches Wissen und Abschlussprüfung (die prozentuelle Aufteilung der Teilleistungen wird vom Kursleiter bekanntgegeben). Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
a. Mindestanforderung: Mitarbeit während des Praktikums, Abfassung eines Protokolls, Klausur,
b. Beurteilungsmaßstab: Mitarbeit 50%, Protokoll 30%, Klausur 20%
b. Beurteilungsmaßstab: Mitarbeit 50%, Protokoll 30%, Klausur 20%
Prüfungsstoff
Inhalte des abgehaltenen Kurses
Literatur
Lehrveranstaltungsunterlagen in Moodle Angaben zur veritefenden Literatur auf den slides im Moodle.
Gruppe 2
max. 16 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
Termine
Verpflichtende Vorbesprechung: folgt
SR 4. Stock/ BZB,Dr.Bohrgasse 9/6.Stock, 1030 Wien.
Termin: 23.11. - 4.12.2020
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend !
Ort: ÜS 1, Ebene 6, BZB, Dr. Bohrgasse 9, 1030 Wien.
Siehe auch Studentenseite der Departments: ;http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Im Rahmen des Praktikums sollen grundlegende molekularbiologische Techniken erlernt und selbständig durchgeführt werden. Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (E.coli, Hefe, Pflanzen).
Techniken: Klonierung bestimmter Gene (inklusive PCR Amplifikation) und Expression in E. coli, Nachweis des Proteins mittels Westernblot Analyse. ncRNA, Northern Blot, Southern Blot. Gene in Hefe- und Pflanzenexpressionsvektoren; Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Transformation pflanzlicher Protoplasten, Expression von GFP (grün fluoreszierendes Protein) und GFP-Fusionsproteinen, in Hefe- und Pflanzenzellen, Expressionsanalyse von Reportergenen, Detektion von GFP im Fluoreszenzmikroskop
Max. Teilnehmerzahl: 20
Prüfungsmodalitäten: Protokoll über die Übung, mündliche oder schriftliche Prüfung direkt nach Beendigung der Übung
Techniken: Klonierung bestimmter Gene (inklusive PCR Amplifikation) und Expression in E. coli, Nachweis des Proteins mittels Westernblot Analyse. ncRNA, Northern Blot, Southern Blot. Gene in Hefe- und Pflanzenexpressionsvektoren; Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Transformation pflanzlicher Protoplasten, Expression von GFP (grün fluoreszierendes Protein) und GFP-Fusionsproteinen, in Hefe- und Pflanzenzellen, Expressionsanalyse von Reportergenen, Detektion von GFP im Fluoreszenzmikroskop
Max. Teilnehmerzahl: 20
Prüfungsmodalitäten: Protokoll über die Übung, mündliche oder schriftliche Prüfung direkt nach Beendigung der Übung
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit. Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen: Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche, schriftliches Protokoll, theoretisches Wissen und Abschlussprüfung (die prozentuelle Aufteilung der Teilleistungen wird vom Kursleiter bekanntgegeben). Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
a. Mindestanforderung: Mitarbeit während des Praktikums, Abfassung eines Protokolls, Klausur,
b. Beurteilungsmaßstab: Mitarbeit 50%, Protokoll 30%, Klausur 20%
b. Beurteilungsmaßstab: Mitarbeit 50%, Protokoll 30%, Klausur 20%
Prüfungsstoff
Inhalte des abgehaltenen Kurses
Literatur
Lehrveranstaltungsunterlagen in Moodle Angaben zur veritefenden Literatur auf den slides im Moodle.
Gruppe 3
max. 18 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
Termine
Verpflichtende Vorbesprechung:
Dienstag 6. Oktober von 10:00 – 11:30 über Jitsi Meet
In der Vorbesprechung werden die finalen TeilnehmerInnenlisten erstellt.Praktikum: 11. - 22.1.2021 ganztägigBegleitendes Seminar 301172 verpflichtend!Ort für Praktikum: ÜS 1, Ebene 6, BZB, Dr. Bohrgasse 9, 1030 Wien.
Siehe auch Studentenseite der Departments:
http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie durch praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen): Herstellung transformationskompetenter Bakterien, Klonierung bestimmter Gene (Restriktion, Ligation, Transformation); Hefetransformation und Bestimmung von Protein-Protein-Interaktion durch die Hefe-Zwei-Hybrid Technologie, Genotypisierung transgener Pflanzen mit PCR, Nachweis der Proteinexpression von transgenen Pflanzen mittels SDS-PAGE und Westernblott Analyse. Expressionsanalyse von Reportergenen in transgenen Pflanzen, Transformation pflanzlicher Protoplasten, transiente Transformation von Tabakpflanzen durch Agroinfiltration, Detektion von YFP (gelb fluoreszierendes Protein) und YFP-Fusionsproteine nach transienter Expression durch Fluoreszenzmikroskopie.
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen:+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)Erlaubte Hilfsmittel bei schriftlicher Prüfung: eigenes Laborprotokoll, Taschenrechner (Internetzugang und Smartphone sind nicht gestattet), Schreibstift.Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
+) Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche (Leistungsanteil 10%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
+) mündliche Prüfung u. Diskussion (täglich) (Leistungsanteil 30%)
+) schriftliches Protokoll (Leistungsanteil 10%)
+) schriftliche Prüfung (Leistungsanteil 20%)
+) Erstellung einer schriftlichen Arbeit in Form eines wissenschaftlichen Artikels (in englischer Sprache) über ein Experiment des Praktikums (Leistungsanteil 30%)
Prüfungsstoff
Inhalt und theoretischer Hintergrund der Übungseinheiten.
Literatur
Lehrveranstaltungsunterlagen in Moodle. Angaben zur vertiefenden Literatur auf den slides im Moodle.
Gruppe 4
max. 16 Teilnehmer*innen
Sprache: Deutsch, Englisch
Lernplattform: Moodle
Lehrende
Termine
Verpflichtende Vorbesprechung: 28.9.2020 über e-mail
Dr. Bohrgasse 9, 1030 Wien
Termin: 12. - 23.10.2020
Begleitendes Seminar 301172 verpflichtend!
Siehe auch Studentenseite der Departments: http://molekularebiologie.univie.ac.at/
Ziele, Inhalte und Methode der Lehrveranstaltung
Ausgewählte Beispiele aus der molekularen Biologie, praktische Durchführung der im Seminar besprochenen Methoden.Im Rahmen des Praktikums sollen grundlegende molekularbiologische Techniken erlernt und selbständig durchgeführt werden. Die Durchführung erfolgt anhand ausgewählter Beispiele in unterschiedlichen Modellorganismen (Bakterien, Hefe, Pflanzen):
z.B.: Klonierung bestimmter Gene (inklusive PCR Amplifikation) und Expression in Bakterien, Klonierung und Expression von bestimmten Genen in Hefe- und Pflanzenexpressionsvektoren, Nachweis von Proteinen mittels Westernblott Analyse, RNA Aufreinigung, Detektion von RNA mittels Northern Blot, Detektion von DNA abschnitten mittels Southern Blot, Hefe-oder Bakterielle-Zwei-Hybrid Technologie, Transformation pflanzlicher Protoplasten, Expressionsanalyse von Reportergenen, Expression von Genen, die für GFP (grün fluoreszierendes Protein) und GFP-Fusionsproteinen kodierenMax. Teilnehmerzahl: 16
z.B.: Klonierung bestimmter Gene (inklusive PCR Amplifikation) und Expression in Bakterien, Klonierung und Expression von bestimmten Genen in Hefe- und Pflanzenexpressionsvektoren, Nachweis von Proteinen mittels Westernblott Analyse, RNA Aufreinigung, Detektion von RNA mittels Northern Blot, Detektion von DNA abschnitten mittels Southern Blot, Hefe-oder Bakterielle-Zwei-Hybrid Technologie, Transformation pflanzlicher Protoplasten, Expressionsanalyse von Reportergenen, Expression von Genen, die für GFP (grün fluoreszierendes Protein) und GFP-Fusionsproteinen kodierenMax. Teilnehmerzahl: 16
Art der Leistungskontrolle und erlaubte Hilfsmittel
Verpflichtende Anwesenheit. Die Beurteilung basiert auf folgenden Teilleistungen: Aktive Teilnahme und Ergebnis der Versuche, schriftliches Protokoll, theoretisches Wissen und Abschlussprüfung (die prozentuelle Aufteilung der Teilleistungen wird vom Kursleiter bekanntgegeben). Jede der Teilleistungen muss positiv sein.
Mindestanforderungen und Beurteilungsmaßstab
Mindestanforderung: Anwesenheit und praktische Arbeit, Protokoll, Abschlussprüfung.Beurteilungsmaßstab: Mitarbeit 50%, Protokoll 30%, Abschlusstest 20%
Prüfungsstoff
Inhalt und theoretischer Hintergrund der Übungseinheit
Literatur
Aktuelle Literatur und Hintergrundinformationen werden vor Kursbeginn auf Moodle zur Verfügung gestellt
Zuordnung im Vorlesungsverzeichnis
BMG 5
Letzte Änderung: Fr 12.05.2023 00:24